一、原理
葉綠體色素在照光時能輻射出熒光。研究葉綠體色素熒光性質，有助于了解它的分子激發態，分子之間的能量傳遞以及分子在活體內的排列。葉綠體光誘導熒光強度的變化（以下簡稱可變熒光）是由于葉綠體吸收光能后，光能在轉化和電子傳遞過程中受阻，能量不能正常的傳遞下去，而以熒光的形式釋放出來，使熒光的強度增加。如果這種變化是由光的影響引起的，就叫光誘導的可變熒光。當然，也可由其它條件誘導的可變熒光。在室溫條件下，葉綠體在685nm處呈現一個熒光發射峰，它是由光系統II發射出來的，這部分熒光稱為固定熒光（F0），是物理性的，它與光系統II的原初反應和電子傳遞無關當對葉綠體進行光誘導時，而發射出的熒光叫可變熒光（ΔF）。固定熒光和可變熒光之和稱為總熒光（Fmax）。由此可見，可變熒光（ΔF）可以代表光系統II反應中心可能利用及轉化能量的能力。所以，ΔF在一定程度上代表光系統II反應中心的活性。而可變熒光與固定熒光的比值則表示光系統II的光能轉換效率。因此，可作為葉綠體光化學活性的一個重要指標。

二、材料、儀器設備及試劑
材料：玉米、菠菜葉片
儀器設備：1.冰箱；2.組織搗碎機；3.冷凍離心機；4.玻璃勻漿器；5.動力學分光光度計。

（三）試劑：葉綠體制備緩沖液（簡稱制備液）。
0.05mol/L 磷酸緩沖液，內含0.3mol/L 蔗糖和0.1mol/L KCl，pH7.2。
三、實驗步驟
1. 葉綠體的制備 稱取10g棄去大葉脈的新鮮植物葉片，先用自來水沖洗，再用蒸餾水洗凈，吸干水分后，放在冰箱里冷凍。然后用剪刀剪碎，置于預冷的組織搗碎機的玻璃缸內，加入50ml制備液，用4層紗布將勻漿過濾，濾液在0℃下用1000×g離心10min。棄去上清液，在沉淀中加入40ml制備液懸浮，再次用1000×g離心10min，取出沉淀，用15ml制備液在玻璃勻漿器內勻漿，則得葉綠體懸浮液備用。
2. 將儀器調整好，并把必要的參數調到預定值，使儀器運轉正常。在光電倍增管前加一個684nm的濾光片，并把激發光波長調到436nm或480nm。
3. 調整基線 將空白緩沖液倒入比色杯中，放入樣品室的樣品架上，打開激發光譜錄基線，如果信號過大，說明濾光片漏光，需更換。
4. 樣品測定 將待測的葉綠體樣品放入比色杯，并放到樣品室內。打開激發光，記錄固定熒光。再打開誘導光，記錄zui大熒光強度（Fmax）。

四、結果計算：
根據記錄的圖譜，計算出固定熒光（F0）和總熒光（Fmax）的數值，并按下述公式計算可變熒光和可變熒光產率。可變熒光ΔF＝Fmax－F0；可變熒光率＝ΔF/F0